Introducción
⌅Las
leguminosas son una fuente de proteínas vitales, micronutrientes
beneficiosos, aminoácidos y vitaminas del grupo B importantes para la
salud humana (Shetty et al., 2022Shetty, S., Sreedharan, J., Varghese, A. y Anil, Y. (2022). Potential of legumes for enhancing human health: A review. Current Nutrition and Food Science, 18(1), 69-79. ISSN 2048-7177.
).
Por tal motivo, se consideran cultivos significativos para la seguridad
alimentaria de la población mundial, fundamentalmente, en los países en
desarrollo. Estas forman parte de la cultura alimentaria y de la dieta
básica en numerosas regiones del mundo.
Existe gran variedad de
legumbres cultivadas, entre las más populares se encuentran las
variedades de frijoles y guisantes. El frijol común (Phaseolus vulgaris L.) está considerado dentro de las leguminosas más significativas para
la alimentación humana, por su aporte esencial en proteína vegetal,
fibra, potasio, ácido fólico entre otros nutrientes (Terry-Alfonso et al., 2021Terry-Alfonso,
E., Gómez-Santiesteban, E., Brown-Gómez, A., Álvarez-Delgado, A.,
Carrillo-Sosa, Y. y Ruiz-Padrón, J. (2021). Respuesta agronómica del
cultivo de frijol a los bioproductos FitoMás-EC® + Gluticid®. ICIDCA sobre los derivados de la caña de azúcar, 55(3). Disponible en: https://www.revista.icidca.azcuba.cu>articulo-6
).
También es de gran importancia por sus propiedades fijadoras de
nitrógeno atmosférico que, en simbiosis con bacterias, mejoran la salud y
la fertilidad de los suelos e incrementan la biodiversidad de los
ecosistemas, creando un entorno adecuado (Solano et al., 2024Solano
Solano, R., Bedolla Solano, J. J., Bedolla Solano, S. y Miranda
Esteban, A. (2024). Análisis de la biodiversidad desde una perspectiva
socioambiental en Las Vigas, Guerrero, México. Revista Iberoamericana para la Investigación y el Desarrollo Educativo, 14(28). https://doi.org/10.23913/ride.v14i28.1856
).
En el caso de las vignas, tenemos el ejemplo del frijol caupí rojo (Vigna unguiculata L. Walp.), que según Méndez (2021)Méndez, N. (2021). Estudio
con fertilización con biol y convencional en los cultivos de maíz (Zea
mays L.) y frijol (Phaseolus vulgaris L.) bajo dos manejos arvenses,
finca El Plantel, Masaya 2017 (Tesis de grado, Universidad Nacional Agraria). Repositorio UNA. Disponible en: https://repositorio.una.edu.ni/4487/1/tnf04m538e.pdf
, es un cultivo anual con un aporte proteico del
22 % y un alto contenido de carbohidratos, vitaminas y minerales. Se
considera una alternativa para los efectos del cambio climático, ya que
garantiza los nutrientes necesarios para la seguridad alimentaria. Este
cultivo se utiliza en asociación con gramíneas como el maíz, lo que
permite que los suelos descansen y las gramíneas absorban el nitrógeno
que aportan las leguminosas (Calderas y Mendoza, 2024Calderas, A. O. y Mendoza, A. J. (2024). Efecto
de la fertilización orgánica e inorgánica sobre el comportamiento
morfológico y productivo del frijol caupí rojo (Vigna unguiculata L.
Walp.) (Tesis de licenciatura, Universidad Nacional Agraria). Repositorio UNA. Disponible en: https://repositorio.una.edu.ni
).
El
garbanzo es una especie que tolera muy bien el estrés hídrico y puede
vivir en relaciones simbióticas, al igual que el frijol. Debido a esto,
el garbanzo y otras leguminosas contribuyen a disminuir el efecto
invernadero, ya que mejoran la absorción de carbono de la atmósfera a
través de la fotosíntesis y fijan el nitrógeno en el suelo (Vargas-Blandino y Cárdenas-Travieso, 2021Vargas-Blandino, D. y Cárdenas-Travieso, R. M. (2021). Cultivo del garbanzo, una posible solución frente al cambio climático. Cultivos Tropicales, 42(1), e09. Disponible en: https://ediciones.inca.edu.cu/index.php/ediciones/article/view/1583
).
Los
residuos de las leguminosas también pueden utilizarse como forraje para
la alimentación animal y como cultivo de cobertura para reducir la
erosión del suelo y combatir las plagas y enfermedades. Sin embargo,
dadas las condiciones climáticas de Cuba, los cultivos de leguminosas no
están exentos de las enfermedades causadas por microorganismos
patógenos, que constituyen la principal causa de pérdidas en la
producción agrícola a nivel mundial. Entre los fitopatógenos, los hongos
se destacan como uno de los grupos principales, tanto por la diversidad
de especies existentes como por los daños que causan (Quintero-Domínguez et al., 2023Quintero-Domínguez,
J. M., Batista-García, R. A., Morales-Rodríguez, C. M. y Pérez-Vicente,
R. (2023). Enfermedades fúngicas en leguminosas: un desafío para la
producción agrícola en Cuba. Cultivos Tropicales, 44(1), 11-20. ISSN: 2227-1899 RNPS: 2301
). Farrás (2020)Farrás, L. (2020). Los cultivos rinden más... pero crecen las amenazas. La Vanguardia. ISSN: 1133-4940. Disponible en: https://lavanguardia.com
y la FAO (2020)FAO (2020). Grandes cultivos. Interempresas.net. Disponible en: https://www.interempresas.net/Articulos/265179-40
afirman que cada año se pierde el 40 % de la
producción mundial de alimentos debido a las plagas que afectan a los
cultivos de interés agroalimentario.
En Cuba, las especies de hongos más comúnmente encontradas en las leguminosas pertenecen a los géneros Cercospora, Colletotrichum, Rhizoctonia, Sclerotium, Fusarium y Macrophomina (Oliva, 2019Oliva, F. C. (2019). Evaluación de cepas de Trichoderma spp. para el manejo de plagas fungosas en el cultivo del frijol (Phaseolus vulgaris L.) (Tesis de grado, Universidad de Matanzas). Disponible en: https://rein.umcc.cu
).
Este último es responsable de causar daños importantes en varios
cultivos, incluido el frijol. El presente estudio tuvo como objetivo
aislar y caracterizar los hongos fitopatógenos presentes en 16
cultivares de leguminosas y determinar la incidencia de estas
enfermedades fúngicas en entidades productivas de la provincia La
Habana, Cuba.
Materiales y Métodos
⌅Los muestreos se efectuaron en la provincia de La Habana, en entidades de Empresas Agropecuarias, pertenecientes al Grupo Empresarial Agrícola (GAG). Se seleccionaron cultivares de las especies de leguminosas: Vigna umbellata (Thunb.) Ohwi & H. Ohashi, Phaseolus vulgaris L., y Cicer arietinum L., que presentaron síntomas de afectación por hongos. El aislamiento y la caracterización de los patógenos se llevó a cabo en el Laboratorio de Conservación de Hongos del Instituto de Investigaciones Fundamentales en Agricultura Tropical “Alejandro de Humboldt” (INIFAT), en el período comprendido entre agosto 2023-abril 2024.
Toma de muestras de las partes aéreas y raíces
⌅Se tomaron muestras de las hojas, los tallos, las vainas, granos y estructuras donde se observó manchas con pigmentación o daño visible. A las plantas con síntomas de marchitez o muertas, se le extrajeron las raíces. Todas las muestras se trasladaron al laboratorio de Conservación de Hongos (en bolsas de papel de tamaño adecuado para su examen) donde se procesaron.
Aislamiento de los cultivos de hongos.
⌅En
las muestras colonizadas donde se observó la presencia de conidios, se
capturaron uno o varios conidios, con el uso de una aguja estéril y el
auxilio de un microscopio estereoscopio (con lente ocular 12 xm), los
cuales se inocularon en de 3-5 placas de Petri estériles con medio de
cultivo de agar-papa-dextrosa. Las muestras donde no se observaron
conidios, se incubaron entre 25-27 ºC, durante 12-48 horas en cámaras
húmedas, preparadas en placas de Petri (15 x 2 cm) con papel de filtro
humedecido con agua estéril y una o dos gotas de glicerina, para
aumentar la humedad relativa dentro de las placas (Mata y Salmones, 2021Mata, G. y Salmones, D. (Eds.). (2021). Técnicas de aislamiento, cultivo y conservación de cepas de hongos en el laboratorio. Instituto de Ecología, A.C. ISBN: 978-607-8833-00-9
). Posteriormente, se realizó la siembra de los conidios de la misma manera anteriormente descrita.
Aislamiento directo de partes de las plantas con síntomas necróticos.
⌅Las
partes de las plantas colonizadas por hongos se lavaron con agua
corriente y se cortaron en porciones de 5 mm, aproximadamente. Para
esterilizar la superficie se empleó una solución de 0,3-0,4 % de
hipoclorito de sodio (NaOCl) y posteriormente se lavaron con agua
destilada estéril durante 1 minuto (Gams et al., 1998Gams, W., van der Aa, H. A., Plaats-Niterink, A. J., Samson, R. A. y Stalpers, J. A. (1998). CBS Course of Mycology (4ª ed.). Centraalbureau voor Schimmelcultures. 165 pp.
).
Las porciones de muestras se secaron y se colocaron en placas con medio
de cultivo de agar-papa-dextrosa y se incubaron a 25 ºC, durante 5
días, en la oscuridad.
Aislamiento a partir de las raíces
⌅Las
raíces infectadas o colonizadas por hongos se lavaron con agua
corriente durante 1-2 horas y se cortaron en porciones de 10-15 mm;
seguidamente, se sumergieron en agua estéril dos o tres veces. Las
porciones de raíces se colocaron en placas Petri estériles que contenían
agar-papa-dextrosa y se incubaron a 25 ºC, durante 5 días, en la
oscuridad (Mata y Salmones, 2021Mata, G. y Salmones, D. (Eds.). (2021). Técnicas de aislamiento, cultivo y conservación de cepas de hongos en el laboratorio. Instituto de Ecología, A.C. ISBN: 978-607-8833-00-9
).
Caracterización de los cultivos de hongos
⌅Una
vez aislados y purificados los patógenos, se procedió a la
caracterización de los mismos teniendo en cuenta los caracteres
micromorfológicos y mediante el estudio de los eventos de la
conidiogénesis. La tipificación de las células conidiógenas,
conidióforos, conidios y otras estructuras con valor taxonómico se
efectuó con el empleo del microscopio (Axioskop 40) y una cámara
fotográfica (Canon G5). El diagnóstico se basó fundamentalmente en el
uso de claves taxonómicas que aplica criterios morfológicos, macro y
microscópicos, relacionados con la fase de reproducción asexual,
observada en los cultivos (Zurita y Urcia, 2017Zurita, S. y Urcia, F. (2017). Manual de procedimientos técnicos para el diagnóstico micológico (1ª ed.). Lima, Perú. ISBN: 978-612-310-094-0. Disponible en: https://www.gob.pe>minsa>informes-publicaciones
; Ramos-García et al., 2021Ramos-García,
B., Hernández, S. A., Fraga, S., Meléndez, O. y Castañeda, R. F.
(2021). Diversidad de hongos queratinofílicos presentes en nueve áreas
de producción hortícola de la provincia La Habana, Cuba. Revista Cubana de Ciencias Biológicas, 9(2). Disponible en: https://www/researgate.net>publication>links
). La conservación de los hongos
aislados se realizó en aceite mineral en la Colección de Cultivos de
Hongos del INIFAT (WFCC-853).
Porcentaje de incidencia de los patógenos caracterizados
⌅Los resultados obtenidos fueron procesados mediante la determinación de los porcentajes de incidencia de los patógenos caracterizados y las partes de las plantas con mayor índice de afectación, utilizando el programa Excel de Microsoft Windows 10.
Para determinar el porcentaje de
incidencia de los diferentes géneros de hongos, se realizó el cálculo
con la siguiente fórmula (Almarales et al., 2022Almarales, M., Nicao, L. y Vasallo, M. (2022). Presencia de hongos fitopatógenos en semillas de diferentes cultivares de Phaseolus vulgaris L. en la provincia Cienfuegos, Cuba. Revista Protección Vegetal. Disponible en: https://censa.edicionescervantes.com/index.php/RPV/article/view/1231
):
Donde:
De igual manera se calcularon las partes de las plantas con mayor afectación.
Resultados y Discusión
⌅En el estudio de 16 cultivares de leguminosas, se realizó el aislamiento y la caracterización de ocho géneros de hongos fitopatógenos (Tabla 1).
Los resultados obtenidos, con respecto a los patógenos caracterizados, corroboran que su incidencia se mantiene similar a la de años anteriores, siendo los hongos del suelo la principal amenaza para la producción de leguminosas, lo que provoca pérdidas significativas en el rendimiento y la calidad.
| Fecha de colecta | Cultivar | Lugar de siembra y Lote | Parte afectada | Patógeno caracterizado | ||
|---|---|---|---|---|---|---|
| Nombre vulgar | Nombre científico | Nombre del cultivar | ||||
| 10/08/2023 | Frijol arroz | Vigna umbellata (Thunb.) Ohwi & H. Ohashi | BRF | INIFAT, Lote 2 | Tallo y raíces | Macrophomina phaseolina |
| 14/08/2023 | Frijol arroz | Vigna umbellata (Thunb.) Ohwi & H. Ohashi | BRF | INIFAT, Lote 2 | Raíces | Macrophomina phaseolina |
| 18/08/2023 | Frijol arroz | Vigna umbellata (Thunb.) Ohwi & H. Ohashi | BRF | INIFAT, Lote 2 | Tallos | Macrophomina phaseolina |
| 07/11/2023 | Frijol Común | Phaseolus vulgaris L. | Rubina | INIFAT, Lote 4 | Hojas y vainas | Ascochyta sp. |
| 07/11/2023 | Frijol Común | Phaseolus vulgaris L. | Caujerí 2170 | INIFAT, Lote 4 | Raíz y tallo | Sclerotium rolfsii |
| 09/11/2023 | Frijol Común | Phaseolus vulgaris L. | Rubi | INIFAT, Lote 4 | Tallo | Corynespora sp. |
| Phaseolus vulgaris L. | Raíces | Fusarium sp. | ||||
| 10/11/2023 | Frijol Común | Phaseolus vulgaris L. | Alubia 1 | INIFAT, Lote 4 | Tallos | Fusarium sp |
| 11/11/2023 | Frijol Común | Phaseolus vulgaris L. | Alubia 4 | INIFAT, Lote 4 | Tallos | Colletotrichum lindemuthianum |
| 28/11/2023 | Frijol Común | Phaseolus vulgaris L. | Wacuto | INIFAT, Lote 4 | Granos y vainas | Macrophomina phaseolina |
| Phaseolus vulgaris L. | Vainas | Fusarium sp. | ||||
| 28/11/2023 | Frijol Común | Phaseolus vulgaris L. | Rubina | INIFAT, Lote 4 | Granos y vainas | Fusarium sp. |
| 30/11/2024 | Frijol Común | Phaseolus vulgaris L. | Jesús | Finca Tirabeque | Tallos y vainas | Ascochyta sp. |
| Phaseolus vulgaris L. | Tallos y vainas | Corynespora cassiicola | ||||
| 30/01/2024 | Habichuela corta | Phaseolus vulgaris L. | Diana | Finca Santa Elena | Hojas | Cladosporium sp. |
| 30/01/2024 | Frijol común | Phaseolus vulgaris L. | Güira 89 | Finca Santa Elena | Tallos | Fusarium sp. |
| 02/02/2024 | Habichuela corta | Phaseolus vulgaris L. | Diana | Finca Santa Elena | Vainas | Fusariumsolani |
| 13/02/2024 | Garbanzo | Cicer arietinum L. | Finca Santa Elena | Tallos y raíces | Fusarium sp. | |
| 09/04/2024 | Frijol común | Phaseolus vulgaris L. | Roxo | INIFAT, Organo- pónico | Hojas | Uromyces appendiculatus |
El género de hongo aislado con mayor porcentaje de incidencia fue Fusarium, con un 37 % (Figura 1).
Estudios realizados en leguminosas cultivadas, en 2001, en la Estación
de Pastos y Forrajes de Niña Bonita, provincia La Habana, reportaron a Cercospora como el género más frecuente, seguido en importancia por Alternaria, Colletotrichum y la especie Fusarium incarnatum (Estrada et al., 2002Estrada,
G., López, D. y López, M. O. (2002). Nuevos registros fúngicos en
leguminosas de la Estación de Pastos y Forrajes de Niña Bonita. Fitosanidad, 6(1). Disponible en: https://www.redalyc.org/articulo
). Otros autores, como Martínez et al. (2014)Martínez, B., Infante, D. y Reyes, Y. (2014). Trichoderma spp. y su función en el control de plagas en los cultivos. Revista Protección Vegetal, 28(1), 1-11. ISSN: 2224-4697. Disponible en: http://scielo.sld.cu
,
evaluaron lotes de semillas de frijol de 16 variedades provenientes de
las provincias de Pinar del Río, Mayabeque y Artemisa, e identificaron
que los hongos de mayor frecuencia de aparición fueron Penicillium sp. (78,4 %), Rhizoctonia solani (77,5 %), Aspergillus niger (68,6 %) y Fusarium solani (51,0 %). Investigaciones recientes realizadas en la región de Centroamérica (Costa Rica) señalan a Macrophomina phaseolina (26,7 %), Fusarium oxysporum (13,6 %) y Athelia rolfsii (5,6 %) como los de mayor incidencia en el frijol común (Granados-Montero et al., 2021Granados-Montero,
M. M., Chaves-Barrantes, N., Chaverri, P., Hernández-Fonseca, J. C. y
Escudero-Leyva, E. (2021). Fungi associated with common bean (Phaseolus vulgaris) wilt in Costa Rica. Mexican Journal of Phytopathology, 39(2), 289-301. https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2011-1
).
Como se puede observar, las especies del género Fusarium se mantienen entre las de mayor frecuencia de aparición y porcentaje de incidencia en diferentes años, coincidiendo con los resultados obtenidos en este estudio.
El patógeno Macrophomina phaseolina (Figura 2)
fue el segundo hongo con mayor porcentaje de incidencia (21 %). Afecta
diversas partes de la planta, causando daños irreversibles. Autores como Lavilla et al. (2023)Lavilla,
M., De Lucia, A., Heck, M. y Fariza, S. (2023). Detección morfológica
de la podredumbre carbonosa en soja y maíz en Misiones, Argentina. Agronomía Mesoamericana, 34(2). https://doi.org/10.15517/am.v34i2.51073
lo señalan como un patógeno importante causante
de la "pudrición carbonosa". Es de hábitat cosmopolita y afecta a una
amplia variedad de cultivos y plantas silvestres en climas
templados-cálidos, subtropicales y tropicales, incluyendo hospedantes de
importancia económica como la soja (Glycine max L.) y el frijol (Márquez et al., 2021Márquez, N., Giachero, M. L., Declerck, S. y Ducasse, D. A. (2021). Macrophomina phaseolina: General characteristics of pathogenicity and methods of control. Frontiers in Plant Science, 12, 634397. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.634397
).
Este hongo fitopatógeno con origen en el
suelo y la semilla, provoca una coloración oscura en el tejido del
hospedante infectado, como resultado de la formación de
microesclerocios, estructuras fúngicas diminutas y redondas que permiten
que el patógeno sobreviva en el suelo o en el material vegetal
infectado, durante mucho tiempo. Los microesclerocios se liberan a
medida que se descompone el sustrato donde se encuentran y las
condiciones sean propicias para su desarrollo (Queensland Government, 2022Queensland Government (2022). Charcoal rot. Disponible en: https://www.business.qld.gov.au/industries/farms-fishing-forestry/agriculture/biosecurity/plants/diseases/horticultural/charcoal-rot
). Existen reportes recientes de grandes pérdidas en el rendimiento de cultivos como la soya y el frijol por la incidencia de Macrophomina phaseolina, lo que se revierte en la afectación para los ingresos a los agricultores (DGSV-DCNRF, 2023DGSV-DCNRF
(2023). Pudrición carbonosa del tallo (Macrophomina phaseolina).
Sader-Senasica. Dirección General de Sanidad Vegetal-Dirección del
Centro Nacional de Referencia Fitosanitaria.Ficha Técnica. Tecámac,
Estado de México. 8 p. Disponible en: https://www.gob.mx
).
Otro género que mostró una alta incidencia (11 %) fue Ascochyta sp., la cual produce lesiones en hojas, tallos y vainas. En las hojas
se presentan manchas de formas circulares (2 a 8 cm de diámetro) de
color café claro con anillos concéntricos y en ocasiones se forman
pequeños puntos de color café oscuro, que son los picnidios. En los
tallos las lesiones son alargadas de color castaño claro con el centro
gris y puntos pardos. Generalmente, estas lesiones se forman en los
nudos de los tallos, mientras que en las vainas las manchas son
redondeadas con bordes oscuros (Pineda et al., 2020Pineda, G., Calderón-Quintero, J. A. y Castaño-Zapata, J. (2020). Guía ilustrada de enfermedades y patógenos en cultivos hortícolas. Universidad de Caldas. ISBN: 978-958-759-236-8
).
El resto de los patógenos aislados en este trabajo se encuentran reportados para las leguminosas, tanto en Cuba como en otros países, con diferentes niveles de daños causados, siempre que las condiciones, tanto naturales como fisiológicas de las plantas, propicien su aparición.
Con respecto a las partes de los cultivos con mayor afectación, se observó una marcada relación con el tipo de patógeno encontrado. Los mayores porcentajes de incidencia se encontraron en los tallos (47 %), las vainas (26 %) y las raíces (21 %) (Figura 3). Esto podría deberse a que la mayoría de los patógenos reportados en este estudio son microorganismos que residen en el suelo, el cual constituye un reservorio natural para ellos.
Entre las principales funciones del tallo se encuentran el sostén de la parte aérea de las plantas y el transporte de nutrientes por su interior. Por lo tanto, la mayor afectación en esta parte se traduce en un mayor número de plantas afectadas en su desarrollo y, por ende, en su productividad. De manera similar, las vainas juegan un papel fundamental en el rendimiento de las leguminosas y su afectación puede incidir sustancialmente.
Estudios recientes realizados por Cho et al. (2023)Cho,
B. Y., Stutz, S. S., Jones, S. I., Wang, Y., Pelech, E. A. y Ort, D. R.
(2023). Impact of pod and seed photosynthesis on seed filling and
canopy carbon gain in soybean. Journal of Plant Physiology, 193(2), 966-979. https://doi.org/10.1093/plphys.kiad324
demostraron que las vainas y las semillas de la
soja contribuyen al proceso de fotosíntesis, incluso bajo el dosel en
las condiciones agrícolas actuales. Este significativo resultado abre
nuevas vías para comprender la importancia de las vainas de soja en los
procesos fotosintéticos, desafiando las nociones convencionales y
ofreciendo una nueva perspectiva para optimizar la productividad de las
plantas.
En cuanto a las raíces, no solo son los órganos
encargados de arraigar y brindar soporte mecánico a la parte aérea de la
planta en el suelo, sino que también cumplen la importante función de
absorber el agua y los nutrientes necesarios para su crecimiento. Esto
permite un aprovechamiento óptimo de los nutrientes y, al mismo tiempo,
minimiza el impacto ambiental (Cabezas y Claassen, 2017Cabezas, R. A. y Claasse, N. (2017). Sistemas radicales de cultivos: extensión, distribución y crecimiento. Agro Sur, 45(2), 31-45. Disponible en: https://revistas.uach.cl/agrosur/article/view
).
En las leguminosas, las raíces juegan un
papel importante ya que en ellas se forman los nódulos, que resultan de
la interacción entre estas plantas y las bacterias del grupo de los Rizobios.
Estas bacterias son capaces de fijar el nitrógeno atmosférico al
establecer una simbiosis con las plantas, las cuales lo almacenan en sus
hojas en forma de proteína (Solano et al., 2024Solano
Solano, R., Bedolla Solano, J. J., Bedolla Solano, S. y Miranda
Esteban, A. (2024). Análisis de la biodiversidad desde una perspectiva
socioambiental en Las Vigas, Guerrero, México. Revista Iberoamericana para la Investigación y el Desarrollo Educativo, 14(28). https://doi.org/10.23913/ride.v14i28.1856
). En general, un alto porcentaje de
afectación en los órganos vegetativos influye en los resultados
productivos de estos cultivos y, en muchas ocasiones, puede incluso
provocar la pérdida total del rendimiento.
El estudio de los
hongos, su caracterización y clasificación se realizó de manera
tradicional mediante técnicas morfológicas. Sin embargo, se recomienda
incorporar nuevas técnicas de estudio, como la microscopía electrónica
de transmisión y barrido, la cromatografía de capa fina, la
caracterización isoenzimática y los grupos de compatibilidad vegetativa
(VCG), entre otras. Estas técnicas permiten avances y resultados más
precisos en la identificación de especies, aunque el examen morfológico
al microscopio y la utilización de las claves taxonómicas sigue siendo
la herramienta fundamental para este tipo de investigación (Armengol y Gramaje, 2023Armengol,
J. y Gramaje, D. (2023). Una visión general de los cambios y la
situación actual de la taxonomía de hongos y oomicetos. En Hongos y oomicetos fitopatógenos. Fitopatología (No. 9). Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/378241512
).
Conclusiones
⌅Se realizó el aislamiento y la caracterización de ocho géneros de hongos fitopatógenos, en el estudio de 16 cultivares de leguminosas producidas en la provincia La Habana, entre 2023 y 2024.
En las leguminosas estudiadas, las especies patógenas aisladas con mayor porcentaje de incidencia fueron; el complejo Fusarium y Macrophomina phaseolina y las partes de las plantas de mayor índice de afectación correspondió a los tallos seguido de las vainas y las raíces.