Aspectos sobre el cultivo in vitro de girasol abordados en el INIFAT
Barra lateral del artículo
Contenido principal del artículo
Resumen
El girasol se encuentra entre los cuatro cultivos oleaginosos más importantes del mundo, cultivándose tanto en países desarrollados como subdesarrollados, debido a sus bajos requerimientos de producción y por su utilidad, tanto en la alimentación humana como animal. Por ello abordar los aspectos relacionados con el cultivo in vitro de girasol resulta importante, teniendo en cuenta además, que este es un cultivo considerado “recalcitrante” para estas técnicas. En los últimos años en el INIFAT se realizaron estudios sobre la callogénesis, regeneración directa de plantas, así como la germinación de embriones inmaduros a diferentes tiempos de polinización y conservación de las semillas. Se encontró que el mayor crecimiento de los callos se produjo en el medio constituido por 5 mg/L de BAP y el explante hipocotilo. La regeneración de los brotes resultó mejor en el medio que contenía la menor dosis de AIA y BAP estudiada. En el caso de la germinación de los embriones, se determinó que un período de siete días de permanencia de las semillas en refrigeración estimuló la germinación y el crecimiento de las plántulas in vitro. En todos los genotipos fue posible la obtención de plántulas a los 40 días de conservadas las semillas, así como su adaptación a condiciones ambientales.
Detalles del artículo
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0.
Aquellos autores/as que tengan publicaciones con esta revista, aceptan los términos siguientes de la Licencia CC Reconocimiento-NoComercial 4.0 Internacional (CC BY-NC 4.0):
Usted es libre de:
- Compartir — copiar y redistribuir el material en cualquier medio o formato
- Adaptar — remezclar, transformar y crear a partir del material
El licenciador no puede revocar estas libertades mientras cumpla con los términos de la licencia.
Bajo las condiciones siguientes:
- Reconocimiento — Debe reconocer adecuadamente la autoría, proporcionar un enlace a la licencia e indicar si se han realizado cambios. Puede hacerlo de cualquier manera razonable, pero no de una manera que sugiera que tiene el apoyo del licenciador o lo recibe por el uso que hace.
- NoComercial — No puede utilizar el material para una finalidad comercial.
- No hay restricciones adicionales — No puede aplicar términos legales o medidas tecnológicas que legalmente restrinjan realizar aquello que la licencia permite.
La revista no se responsabiliza con las opiniones y conceptos emitidos en los trabajos, son de exclusiva responsabilidad de los autores. El Editor, con la asistencia del Comité de Editorial, se reserva el derecho de sugerir o solicitar modificaciones aconsejables o necesarias. Son aceptados para publicar trabajos científico originales, resultados de investigaciones de interés que no hayan sido publicados ni enviados a otra revista para ese mismo fin.
La mención de marcas comerciales de equipos, instrumentos o materiales específicos obedece a propósitos de identificación, no existiendo ningún compromiso promocional con relación a los mismos, ni por los autores ni por el editor.
Cómo citar
Referencias
Ainsley, P. J.; F. A. Hammerschlang; G. W. Bertozzit Collins y M. Sedgley: “Regeneration of almond immature seed cotyledons”. Plant cell, tissue and organ culture, 67 (3): 221-226, 2001.
Aspiroz, HS, Vincourt T, Serieys P y Galais A (1987) La culture in vitro des embryos inmatures dans l accelération du cycle de sélection des dignées de tournesol et ses effects morphovégétalifs. Helia. 10: 35-38.
Baker, CM, et al., (1999) Plant Cell, Tissue and Organ Culrure. 58: 39-49.
Bohorova, N, Atanassov A y Georgieva-Todorova J (1985) In vitro organogenesis, androgenesis and embryo culture, in the genus Helianthus L. Z. Pflanzenzüchtg. 95, 35-44.
Chaturvedi, R. y S. P. Bhatnagar: “High- frequency shoot regeneration from cotyledon explants of watermelon cv. Sugar Baby”. In vitro Cell Dev. Biol.- Plant, 37: 255-258, 2001.
Filippone, E, M Leone R Penza (1992) Recent advances in cell and tissue culture. En: Enhancing Research on Tropical Crops in Africa. Eds. G Thottappilly. LM Monti, DR Moham Raj, AW Morre. 364 pp.
Freyssinet, M. y G. Freyssinet: “Fertile plant regeneration from sunflower (Helianthus annuus L) immature embryos”. Plant Sci., 56: 177-181, 1988.
Gallenberg, P, Espinsse A y Carson M (1990) In vitro production of somaclonal variants resistant to Alternaria Helianthi. En: Proceedingns: Sunflower Research Workshop.28.
Geneviève, J.; R. Bronner y G. Hahne: “Somatic embryogenesis and organogénesis induced on the immature zygotic of sunflower (Helianthus annuus L.) cultivated in vitro: role of the sugar”. Plant Cell Reports. 15: 200-204, 1995.
George, EF (1993) Plant propagation by tissue culture. Part 1. The technology. 2 da Edición.
Greco, B.; O. A. Tanzarela, G. Carrozzo y A. Blanco: “Callus induction and shoot regeneration in sunflower (Helianthus annuus L)”. Plant Science Letters, 36: 73-77, 1984.
Laparra, H, Stroeva P, Ivanov P y Haahne G (1997) Plant regeneration from different explants in
Helianthus smithii Heiser. Plant Cell Rep. 16: 692-695.
Larkin, PJ y Scowcroft WR (1981) Somaclonal variation a novel source of variability from cell cultures for plant improvement. Theor. Appl. Genet. 60: 197-214.
Liu, JH (1992) Adventitious rooting in hypocotyls of sunflower (Helianthus annuus L)
Lupi, MC, Bennici A, Locci F y Gennai (1987) Plantlet formation from callus and shoot-tip culture of (Helianthus annuus L). Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 11: 47- 55.
Mayor, ML, Nestares G, Zorzoli R, Ludueña P y Picardi (2001) Shoot organogenesis derived from cotyledonary explants in sunflower (Helianthus L.). Redbio 2001.
Murashige, T. y F. Skoog: “A revised medium of rapid growth and bio-assays with tobacco tissue culture”. Physiol. Plant. 15: 473- 497, 1962.
Nestares, G. (2008) http://www.w3.org/TR/REC-html40/loose.dtd">
Nestares, G, Zorzoli R, Mroginski L y Picardi L (1996) Plant regeneration from mature sunflower seeds. Helia 19 (24): 107-112.
Nestares, G, Zorzoli R, Mroginski L y Picardi L (1998) Cytoplasmic effects on the regeneration ability of sunflower. 117: 188-190.
Paterson, KE (1984) Shoot tip culture of Helianthus annuus- flowering and development of adventitious and multiple shoots. Am. J. of Bot.71 (7) 925- 931.
Škorié, D (1992) Achievements and future directions of sunflower breeding. Field Crops Research. 30: 231-270.
Soneji, J. R.; P. S. Rao y M. Mhatre: “Enhanced regeneration of multiple shoots and plantlets in young cotyledons of neem, Azadirachta indica A.” Juss. Physiol. Mol. Biol. Plants, 7 (2): 175-180, 2001.
Witrzens, B, Scowcroft WR, Downes RW y Larkin PJ (1988) Tissue culture and plant regeneration from sunflower (Helianthus annuus) and interespecific hybrids (Helianthus tuberosus x H. annuus). Plant Cell, Tissue and Organ Culture.13: 61-76.
Woo S.H.; A. Nair, T. Adachi y C. G. Campbell: “Plant regeneration from cotyledons tissues of common Buckwheat (Fagopyrum esculentum Moench)”. In vitro. Cell Dev. Biol.- Plant, 36: 358-361, 2000.
Zorzoli, R, Coinly EL, Ludueña P y Picardi L (1994) Rescate de embriones inmaduros: reducción del intervalo generacional para la obtención de materiales selectos de girasol. Helia. 17: 27-32.
Zorzoli, R, Nestares GM y Mroginski LA (1996) Micropropagación de genotipos de girasol (Helianthus annuus) por cultivo in vitro y la evaluación de las fases de aclimatación. Invest. Agr. : Prod. Prot. 11 (3). 389-396.